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• W2072321115 abstract "Saccharomyces cerevisiae as the most simple eukaryotic organism is broadly accepted as a laboratory model organism. For the detection of potential toxic effects of pure compounds and complex composed samples like wastewater a miniaturised short-term in vitro cyto- and genotoxicity screening assay was developed. The assay based on genetically modified S. cerevisiae cells deleted in the prominent drug efflux transporters Pdr5, Snq2, and Yor1 that facilitate pleiotropic drug resistance. The yeast strain devoid of these proteins that mediate the efflux of structurally diverse hydrophobic compounds exhibited an increased sensitivity to a variety of organic compounds. The DNA damage inducible RAD54 promoter fused to a yeast optimized derivative of the GFP (green fluorescent protein) gene from the jelly fish Aequorea victoria served as an indicator of DNA damage in this strain. Various pure compounds including the direct-acting genotoxins methyl-N-nitro-N-nitrosoguanidine (MNNG), 4-nitroquinoline-N-oxide (4-NQO), methyl methanesulfonate (MMS) and hydroxyurea as well as the heavy metals cadmium and chromium(VI), the insecticide lindane and the central nervous system stimulant caffeine were tested exhibiting dose dependent induction of green fluorescence. All compounds were in parallel examined for chronic toxicity. A bioassay detecting simultaneously geno- and cytotoxic effects of potential toxicants in a single assay can be an important tool with a variety of applications in environmental monitoring and aquatic ecotoxicology. By partial automation and miniaturisation to microtitration scale this bioassay enables sensitive and fast biomonitoring for a multitude of samples. Nachweis von zyto- und gentoxischer Aktivität verschiedener Einzelstoffe mit Saccharomyces cerevisiae Saccharomyces cerevisiae als der einfachste eukaryotische Organismus ist weithin als Modellorganismus anerkannt. Für den Nachweis von zyto- und gentoxischen Eigenschaften von Einzelstoffen und komplex zusammengesetzten Proben wie Abwässern wurde ein In-vitro-Kurzzeittest im Mikrotiterplatten-Maßstab entwickelt. Das Verfahren basiert auf gentechnisch modifizierten S. cerevisiae-Zellen, bei denen die Gene der Zellmembran-Transportsysteme Pdr5, Snq2 und Yor1 deletiert sind. Diese vermitteln durch den Ausstoß von strukturell sehr unterschiedlichen hydrophoben Verbindungen mit geringer Substratspezifität das Phänomen der multiplen Drogenresistenz. Der so erzeugte Hefestamm weist eine erhöhte Empfindlichkeit gegenüber einer Vielzahl organischer Verbindungen auf. Als Indikator zum Nachweis von DNA-Schädigungen diente in diesem Stamm der DNA-schadensabhängige RAD54-Promotor, der an ein für Hefen optimiertes Derivat des GFP (grün fluoreszierendes Protein) Gens aus der Tiefseequalle Aequorea victoria gekoppelt wurde. Verschiedene Einzelstoffe wie die direkt wirkenden Gentoxine Methyl-N-nitro-N-nitroso-guanidin (MNNG), 4-Nitrochinolin-N-oxid (4-NQO), Methylmethansulfonat (MMS) und Hydroxyharnstoff, die Schwermetalle Cadmium und Chrom(VI), das Insektizid Lindan sowie das das zentrale Nervensystem anregende Koffein induzierten eine dosisabhängige Zunahme der grünen Fluoreszenz. Gleichzeitig wurden alle Substanzen auf ihre chronische Toxizität hin überprüft. Ein Biotestverfahren, das gleichzeitig gen- und zytotoxische Effekte möglicher Giftstoffe in einer einzigen Beprobung nachweist, kann ein wichtiges Instrument mit breiten Einsatzmöglichkeiten in der Umweltüberwachung und der aquatischen Ökotoxikologie sein. Durch die partielle Automatisierung und die Verkleinerung auf den Mikrotiter-Maßstab ermöglicht dieses Verfahren ein empfindliches und schnelles Biomonitoring einer Vielzahl von Proben." @default.
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